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Solarbio 小鼠脾臟淋巴細胞分離液試劑盒

Solarbio 小鼠脾臟淋巴細胞分離液試劑盒

注意事項

A． 本分離液是敏光型的，在運輸和貯藏過程中應在18℃-25℃避光保存，啟封后置4℃保存避免微生物污染。另外，本品為真空包裝，未啟封前置于10℃ 以下易出現白色結晶，影響分離效果。

B． 待分離的樣本要求新鮮，避免冷凍和冷藏。分離液和所分離樣本一定在20℃水浴

箱中復溫20 分鐘保證分離液和所分離樣本溫度在20℃±2℃時分離效果好，且所有操作

過程一定要在無菌條件下進行。

C． 由于各品牌離心機的性能不同，國內南北地區(qū)溫度環(huán)境和四季的差異，可能影響

分離效果，用戶可以調節(jié)離心轉數，調節(jié)離心的時間，摸索佳的分離條件（具體分離條件

各實驗室自定）。D． 好使用無靜電反應的離心管，推薦使用未經過堿處理的玻璃離心管。

E． 分離過程中所用其他試劑如：hydroxyethyl starch550、全血及組織稀釋液、細胞洗滌液及

紅細胞裂解液等以我公司產品為優(yōu)選擇，本公司相關系列產品無菌、無病毒、無支原體、

低內毒素水平且無細胞毒性，所獲得的細胞可保持完好的生物活性和完整的細胞形態(tài)。

4. 應 用

適用于從各種動物脾臟中分離淋巴細胞。

5. 產品性能指標pH 7.0-7.5

滲透壓 280-340mOsmol/kg

內毒素 ≤0.5EU/ml

無菌 直接接種培養(yǎng)14 天后培養(yǎng)基澄清

澄明度及不溶性顆粒物 每50ml溶液中含10μm以上的不溶性微粒20粒以下，

含25μm以上的不溶性微粒5粒以下

6. 貯藏及保存期限

18℃-25℃避光保存，有效期兩年。啟封后置4℃保存，有效期一周。

注：若保證無微生物污染，啟封后可置4℃長期保存。但應注意保存溫度較低時本分離液易

出現白色結晶，影響分離效果。7. 實驗前準備

A． 試劑

脾臟淋巴細胞分離液試劑盒所含試劑、胎牛血清

B． 器材

玻璃離心管、玻璃滴管

水平轉子離心機、無菌工作臺

8. 各種動物脾臟淋巴細胞分離液使用方法說明及圖例

取 1ml 脾臟細胞懸液（細胞濃度為2×108-1×109個/ml，制備方法詳見“9、脾臟組織

單細胞懸液的制備方法”）小心疊加在C 液之液面上（比例為1：1），20℃±2℃，400g（約

1500 轉/分），離心20 分鐘（半徑15cm 水平轉子）。此時離心管中由上下細胞分四層。*層;為稀釋液層。第二層；為環(huán)狀乳白色淋巴細胞層。第三層；為透明分離液層。第四層；為紅細胞層。收集第二層細胞放入含細胞洗滌液4-5 毫升的試管中，充分混勻后，以500g（約1800 轉/分）離心20 分鐘。沉淀經反復洗滌2 次即得所需淋巴細胞

注： 提取率大于80%。

9. 脾臟組織單細胞懸液的制備

注： A. 全過程及所需試劑要求無菌環(huán)境。

B．本試劑盒中不包含膠原酶，若采用酶消化法制備單細胞懸液，請用戶根據各實驗

室要求另購不同類型膠原酶。

Ⅰ. 剪碎法：將組織塊放入平皿后，加入少量 F液及 20%胎牛血清；用眼科剪將組織剪勻

漿狀，加入5mlF 液及20%胎牛血清；用吸管吸取組織勻漿，用100 目不銹鋼濾網（另購）過

濾到試管內；離心沉淀1500 轉/分×3 min，再用細胞洗滌液清洗3 次，每次以500rpm 短時

低速離心除去細胞碎片，以200 目不銹鋼濾網（另購）過濾去細胞團塊。作細胞計數并調整

細胞濃度為（2～5）×107個/ml。常溫下放置, 待測細胞的活力。分離前用20%胎牛血清或

全血及組織稀釋液懸起細胞濃度為2×108-1×109個/ml 的單細胞懸液備用。

 Ⅱ. 勻漿器法：用眼科剪將組織剪成小塊；放入 70ml 組織研磨器內，加入2mlF 液及20%胎

牛血清；緩慢轉動研棒，研磨勻漿；用5mlF 液及20%胎牛血清沖洗研器；收集細胞懸液，

經200 目不銹鋼濾網（另購）過濾；離心沉淀800rpm×2min ，再用細胞洗滌液洗3 次，離

心沉淀。作細胞計數并調整細胞濃度為（2～5）×107個/ml。常溫下放置, 待測細胞的活力。分離前用20%胎牛血清或全血及組織稀釋液懸起細胞濃度為2×108-1×109個/ml 的單細胞懸液備用。

Ⅲ. 酶消化法：

A． 用F 液將膠原酶稀釋，終濃度為400 U/ml，于冰浴備用。

B． 取一適當大小培養(yǎng)皿進行操作：用鑷子夾碎動物脾臟，加入稀釋后的膠原酶，37℃消化20 分鐘。

C． 以100 或200 目不銹鋼濾網（另購）過濾，離心沉淀800prm×2min ，再用細胞洗滌液

洗3 次，離心沉淀。作細胞計數并調整細胞濃度為（2～5）×107個/ml。常溫下放置, 待測細胞的活力。分離前用20%胎牛血清或全血及組織稀釋液懸起細胞濃度為2×108-1×109個/ml 的單細胞懸液備用。

計數與計算過程

1）、在細胞計數板中央放置計數的蓋玻片。

2）、用玻璃虹吸管吸取細胞，讓虹吸管在蓋玻片上或下側的計數板凹蹧處流出懸液，

蓋玻片被液體充滿為止。

3）、置顯微鏡下計數四角大方格內的細胞總數。對于壓線的細胞只計數在上線和左線者，

對于細胞團按單個細胞計數。4）、按下式計數細胞懸液的密度：

細胞密度＝（4 個大格細胞總數/4）×104個/ml×稀釋倍數公式中乘以104因為計數板中每一個大格的體積為：1.0mm（長）×1.0mm（寬）×0.1mm（高）＝0.1mm3而 1ml＝1000mm3

細胞計數要點：

A． 進行細胞計數時，要求懸液中細胞數目不低于104個/ml，如果細胞數目很少要進行離

心再懸浮于少量培養(yǎng)液中；顯微鏡下計數時，遇到2 個以上細胞組成的細胞團，應按單個細

胞計算。如果細胞團>10％，說明細胞分散不充分; 或細胞數<200 個/10mm

2或>500 個/10 mm2時，說明稀釋不當，需重新制備細胞懸液。

B． 要求細胞懸液中的細胞分散良好，否則影響計數準確性。C． 取樣計數前，應充分混勻細胞懸液，尤其是多次取樣計數時更要注意每次取樣都要混勻，以求計數準確；

D． 數細胞的原則是只數完整的細胞，若細胞聚集成團時，只按照一個細胞計算。如果細

胞壓在格線上時，則只計上線，不計下線，只計左線，不計右線。

E． 操作時，注意蓋玻片下不能有氣泡，也不能讓懸液流入旁邊槽中，否則要重新計數。

初學者易犯的錯誤：

A． 計數前未將待測懸液吹打均勻。

B． 滴入細胞懸液時蓋玻片下出現氣泡。

C． 滴入懸液時的量太多，使細胞懸液流入旁邊的槽中。